Gospodarka mineralna roślin
Sprawdź co umiesz
Proces lignifikacji pasemek Caspary’ego do dziś nie jest dostatecznie poznany. Wiadomo natomiast, że za prawidłowe odkładanie ligniny w pasemkach Caspary’ego odpowiadają enzymy z grupy lakaz (jest ich 17) oraz peroksydaz (73). Poniżej skrótowo zaprezentowano wyniki badań dwóch zespołów naukowców. Oba artykuły zostały opublikowane w tym samym, prestiżowym czasopiśmie naukowym Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America (PNAS).
W artykule z czerwca 2020 roku dowiadujemy się, że enzym LAC3 (lakaza 3) odpowiedzialny jest za prawidłową lignifikację pasemek Caspary’ego. Osobniki rzodkiewnika pospolitego (Arabidopsis thaliana) pozbawione genu kodującego LAC3 wytwarzały białka CASP1 podobnie jak osobniki bez mutacji, jednak rozmieszczenie tych białek (CASP1) w błonie było nieregularne, a lignifikacja pasemek Caspary’ego niezgodna ze schematem obserwowanym u roślin dzikich (bez mutacji). W podsumowaniu artykułu z listopada 2020 roku czytamy, że wytworzone przez zespół chińskich naukowców pojedyncze mutanty (pozbawione któregokolwiek z 17 genów kodujących lakazy, w tym genu kodującego LAC3) Arabidopsis thaliana wytwarzają prawidłowe pasemka Caspary’ego, jednak ubytek choć jednej z 47 peroksydaz skutkuje deformacją lub brakiem pasemek Caspary’ego.
Indeks dolny Na podstawie: N. Rojas‑Murcia i wsp., High‑order mutants reveal an essential requirement for peroxidases but not laccases in Casparian strip lignification, PNAS, 2020; Y. Zhuang i wsp., Laccase3‑based extracellular domain provides possible positional information for directing Casparian strip formation in Arabidopsis, PNAS, 2020. Materiał wykorzystany na podstawie art. 29 ustawy o prawie autorskim i prawach pokrewnych (prawo cytatu). Indeks dolny koniecNa podstawie: N. Rojas‑Murcia i wsp., High‑order mutants reveal an essential requirement for peroxidases but not laccases in Casparian strip lignification, PNAS, 2020; Y. Zhuang i wsp., Laccase3‑based extracellular domain provides possible positional information for directing Casparian strip formation in Arabidopsis, PNAS, 2020. Materiał wykorzystany na podstawie art. 29 ustawy o prawie autorskim i prawach pokrewnych (prawo cytatu).
Na schemacie przedstawiono wpływ pH gleby na pobieranie makroelementów przez rośliny. Pokolorowany obszar oznacza różną dostępność pierwiastków dla roślin – im szerszy pas, tym lepsza dostępność minerałów.
H 1. wodór, 2. azot, 3. fosfor, 4. magnez, 5. siarka, 6. wapń, 7. chlor, 8. sód, 9. węgiel, 10. potas, 11. tlen
O 1. wodór, 2. azot, 3. fosfor, 4. magnez, 5. siarka, 6. wapń, 7. chlor, 8. sód, 9. węgiel, 10. potas, 11. tlen
N 1. wodór, 2. azot, 3. fosfor, 4. magnez, 5. siarka, 6. wapń, 7. chlor, 8. sód, 9. węgiel, 10. potas, 11. tlen
P 1. wodór, 2. azot, 3. fosfor, 4. magnez, 5. siarka, 6. wapń, 7. chlor, 8. sód, 9. węgiel, 10. potas, 11. tlen
S 1. wodór, 2. azot, 3. fosfor, 4. magnez, 5. siarka, 6. wapń, 7. chlor, 8. sód, 9. węgiel, 10. potas, 11. tlen
Ca 1. wodór, 2. azot, 3. fosfor, 4. magnez, 5. siarka, 6. wapń, 7. chlor, 8. sód, 9. węgiel, 10. potas, 11. tlen
Mg 1. wodór, 2. azot, 3. fosfor, 4. magnez, 5. siarka, 6. wapń, 7. chlor, 8. sód, 9. węgiel, 10. potas, 11. tlen
K 1. wodór, 2. azot, 3. fosfor, 4. magnez, 5. siarka, 6. wapń, 7. chlor, 8. sód, 9. węgiel, 10. potas, 11. tlen
Na 1. wodór, 2. azot, 3. fosfor, 4. magnez, 5. siarka, 6. wapń, 7. chlor, 8. sód, 9. węgiel, 10. potas, 11. tlen
Cl 1. wodór, 2. azot, 3. fosfor, 4. magnez, 5. siarka, 6. wapń, 7. chlor, 8. sód, 9. węgiel, 10. potas, 11. tlen
Na wykresie przedstawiono wyniki pewnego doświadczenia z dwiema odmianami jęczmienia. Ziarna umieszczono w kiełkownikach w roztworze pożywki bez soli (próba 0) i z różnymi stężeniami NaCl.
- 1. zestaw danych:
- NaCl [[mmol/dm[baseline‑shift: super; font‑size: smaller;]3[/superscript] ]]: 0
- Promyk: 6.5; Podpis osi wartości: średnia długość korzeni [[cm]]
- Suweren: 6.5; Podpis osi wartości: średnia długość korzeni [[cm]]
- 2. zestaw danych:
- NaCl [[mmol/dm[baseline‑shift: super; font‑size: smaller;]3[/superscript] ]]: 50
- Promyk: 8.5; Podpis osi wartości: średnia długość korzeni [[cm]]
- Suweren: 9; Podpis osi wartości: średnia długość korzeni [[cm]]
- 3. zestaw danych:
- NaCl [[mmol/dm[baseline‑shift: super; font‑size: smaller;]3[/superscript] ]]: 100
- Promyk: 6.3; Podpis osi wartości: średnia długość korzeni [[cm]]
- Suweren: 8; Podpis osi wartości: średnia długość korzeni [[cm]]
- 4. zestaw danych:
- NaCl [[mmol/dm[baseline‑shift: super; font‑size: smaller;]3[/superscript] ]]: 150
- Promyk: 5; Podpis osi wartości: średnia długość korzeni [[cm]]
- Suweren: 5.8; Podpis osi wartości: średnia długość korzeni [[cm]]
Hydroponika polega na uprawie roślin w wodzie z dodatkiem substancji odżywczych, bez użycia tradycyjnego podłoża organicznego (ziemi). Dzięki temu korzenie roślin mają bezpośredni kontakt z wodą oraz rozpuszczonymi w niej składnikami pokarmowymi i nie rozrastają się nadmiernie.
Indeks dolny Źródło: Katarzyna Józefowicz, Hydroponiczna uprawa roślin doniczkowych: co to jest hydroponika, jak uprawiać rośliny w hydroponice, murator.pl. Materiał wykorzystany na podstawie art. 29 ustawy o prawie autorskim i prawach pokrewnych (prawo cytatu). Indeks dolny koniecŹródło: Katarzyna Józefowicz, Hydroponiczna uprawa roślin doniczkowych: co to jest hydroponika, jak uprawiać rośliny w hydroponice, murator.pl. Materiał wykorzystany na podstawie art. 29 ustawy o prawie autorskim i prawach pokrewnych (prawo cytatu).